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Comprendre les moteurs du développement des ovules

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Comprendre les moteurs du développement des ovules
Une paire d’ovaires de type sauvage enfermés dans des ovaires avec knockdown msps. Cette image illustre le rôle critique des Msps dans le développement des ovules. Magenta, marquage F-actine ; Cyan, marquage ADN. Avec l’aimable autorisation du laboratoire Gelfand.

Selon une étude, des scientifiques médicaux de l’Université Northwestern ont déterminé comment les protéines du cytosquelette contribuent au développement des œufs en développement chez les mouches des fruits, des découvertes qui font progresser la compréhension de la façon dont les ovules se forment et se différencient des autres cellules sœurs. publié dans le Actes de l’Académie nationale des sciences.

Vladimir Gelfand, Ph.D., Leslie B. Ari Cellular, Molecular and Anatomical Sciences, était l’auteur principal de l’étude publiée dans la revue Actes de l’Académie nationale des sciences.

Les ovocytes, ou ovocytes en développement, sont formés à partir d’un groupe de cellules sœurs au sein de l’ovaire lorsqu’une cellule se différencie en ovocyte et que les autres cellules deviennent des « infirmières », leur fournissant des « matériaux de construction », à savoir des ARNm, des protéines et des organites nécessaires à leur développement. croissance. Il a dit que les cellules nourricières nourrissent l’ovule puis meurent dans le cadre du processus de développement. Wen Lu, Ph.D.professeur adjoint de recherche Biologie cellulaire et du développement Et le premier auteur de l’étude.

« Nous appelons cela » les gagnants remportent tout « , et ces structures cellulaires interconnectées sont hautement conservées ; vous pouvez voir cela se produire depuis les mouches des fruits, notre système modèle, jusqu’aux mammifères, y compris les humains », a déclaré Lu.

Cependant, les mécanismes à l’origine de ce processus n’étaient pas bien compris, ce qui a incité le laboratoire à explorer davantage Vladimir Gelfand, Ph.D.Professeur Leslie B. Arey de sciences cellulaires, moléculaires et anatomiques et auteur principal de l’étude.

« Ces œufs sont essentiellement des parasites », a déclaré Gelfand, également professeur de biologie. Biologie cellulaire et du développement. « Ils ne fabriquent pas de protéines ; Tout cela se fait dans les cellules nourricières et est pompé dans l’œuf le long des microtubules, ces petites voies de chargement, par le moteur moléculaire cytoplasmique de la dynéine.

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Dans la présente étude, les scientifiques ont cultivé des ovaires de mouches des fruits, qui partagent environ 75 % de leur ADN avec les humains et subissent des processus de développement cellulaire similaires.

Ce GIF montre la dynéine transportant l’ARNm msps de la cellule nourricière à l’ovocyte le long d’une voie de microtubules polarisés. Avec l’aimable autorisation du laboratoire Gelfand.

Ensuite, les chercheurs ont utilisé l’imagerie en direct pour suivre les protéines à l’intérieur des ovules et des cellules nourricières. Ils ont observé que l’ovocyte génère un plus grand nombre de microtubules, qui sont des « autoroutes » intercellulaires utilisées pour accéder et transporter les protéines et autres ressources des cellules nourricières.

Chez l’homme, la protéine XMAP215 favorise la croissance des microtubules, tandis que chez les mouches des fruits, ce processus est régulé par un homologue génétique appelé microbroches (Msps).

Les scientifiques ont ensuite découvert que l’ARNm (ARN messager) de Msps, qui contient les instructions permettant de fabriquer la protéine Msps, était concentré dans l’ovule. Selon l’étude, la destruction de l’ARN messager (ARNm) a eu un effet négatif sur le développement des microtubules et la croissance cellulaire.

En utilisant l’hybridation in situ par fluorescence d’une seule molécule, les chercheurs ont découvert que la dynéine, une protéine motrice du cytosquelette qui transporte la cargaison le long des microtubules des cellules, était responsable de l’accumulation d’ARNm de Msps à l’intérieur de l’œuf.

Wen Lu, Ph.D., professeur adjoint de recherche en biologie cellulaire et développementale, a été le premier auteur de l’étude publiée dans la revue Actes de l’Académie nationale des sciences.

Selon l’étude, l’élimination de la dynéine a entraîné une diminution de la quantité d’ARNm dans l’œuf, entraînant l’arrêt de la croissance cellulaire normale.

Les résultats identifient Msps et dynein comme un duo dynamique dans le contrôle de la spécialisation et du développement des œufs, a déclaré Gelfand. La dynéine apporte plus d’ARNm Msps dans l’œuf, et cet ARNm produit plus de protéine Msps, ce qui à son tour crée plus de traces de microtubules pour le moteur de la dynéine. De cette façon, la dynéine et le Msps forment une boucle de rétroaction positive qui favorise la croissance des œufs, a déclaré Gelfand.

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« L’identité de l’œuf est une question fondamentale en biologie du développement », a déclaré Gelfand. « Savoir ce qu’implique l’identification d’un ovule parmi les 16 cellules interconnectées dont il naît est important car il s’agit de la première étape du développement. Il est utile de savoir que les microtubules et les moteurs des microtubules en sont une partie essentielle. »

Les recherches futures se concentreront sur les facteurs qui déterminent quelles cellules deviennent des œufs, a déclaré Gelfand.

« Nous voulons connaître le mécanisme derrière cela », a déclaré Gelfand, membre de l’association. Robert H. Cancer complet de Lurie De l’Université Northwestern. Est-il suffisant de transporter de petits fuseaux dans la cellule pour déterminer l’œuf ? Si on le pompe dans une cellule qui n’est pas censée être un œuf, est-ce suffisant pour le convertir ? Grâce à l’optogénétique, nous tenterons de renverser la situation et de changer le destin de la cellule.

L’étude a été financée par la subvention R35GM131752 de l’Institut national des sciences médicales générales.

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La recherche sur la structure des centromères donne de nouvelles informations sur les mécanismes des erreurs de ségrégation chromosomique

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Des chercheurs du groupe COPS, en collaboration avec des chercheurs de l’Université d’Édimbourg, ont fait une nouvelle découverte surprenante dans la structure du centromère, la structure impliquée pour garantir que les chromosomes se séparent correctement lorsqu’une cellule se divise. Des erreurs dans la ségrégation des chromosomes peuvent entraîner la mort cellulaire et le développement d’un cancer. Les chercheurs ont découvert que le centromère se compose de deux sous-domaines. Cette découverte fondamentale a des implications importantes pour le processus de ségrégation des chromosomes et fournit de nouveaux mécanismes sous-jacents aux divisions défectueuses des cellules cancéreuses. La recherche a été publiée dans cellule Le 13 maioui 2024.

Notre corps est constitué de milliards de cellules, dont la plupart ont une durée de vie limitée et doivent donc se reproduire pour remplacer les vieilles cellules. Ce processus de reproduction est appelé division cellulaire ou mitose. Lors de la mitose, la cellule mère duplique ses chromosomes afin de transmettre le matériel génétique aux cellules filles. Les paires de chromosomes identiques qui en résultent, les chromatides sœurs, sont maintenues ensemble par une structure appelée centromère. Les chromatides sœurs doivent ensuite être divisées à parts égales entre les deux cellules filles pour garantir que chaque cellule fille est une copie exacte de la cellule mère. Si des erreurs se produisent lors de la ségrégation, une cellule fille aura trop de chromosomes, tandis que l’autre en aura trop peu. Cela peut conduire à la mort cellulaire ou au développement d’un cancer.

Le rôle du centromère

Le centromère est une partie du chromosome qui joue un rôle essentiel dans la ségrégation des chromosomes pendant la mitose. Le processus de division des chromatides sœurs sur les cellules est dirigé par l’interaction entre les centromères et les structures appelées microtubules du fuseau. Ces microtubules fusiformes sont responsables du désassemblage des chromatides et ainsi de la séparation des chromatides sœurs. « Si l’attachement du centromère aux microtubules du fuseau ne se produit pas correctement, cela conduit à des erreurs de ségrégation chromosomique fréquemment observées dans le cancer », explique Carlos Sacristan Lopez, premier auteur de cette étude. Comprendre la structure des centromères peut contribuer à mieux comprendre la fonction des centromères et son rôle dans la mauvaise ségrégation des chromosomes.

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Pour étudier la structure du centromère, les chercheurs ont utilisé une combinaison de techniques d’imagerie et de séquençage. L’imagerie par microscopie à super-résolution a été réalisée à l’Institut Hubrecht, tandis que le groupe de Bill Earnshaw effectuait le séquençage. Cette collaboration a conduit à une nouvelle découverte surprenante dans la structure du centromère. On pensait auparavant qu’il s’agissait d’une structure compacte attachée à des microtubules multi-fuseaux, mais il s’est avéré que le centromère était constitué de deux sous-domaines. « C’était une découverte très surprenante, car les sous-domaines lient les microtubules indépendamment les uns des autres », explique Carlos. Cependant, pour former les bonnes associations, ils doivent rester étroitement liés. Cependant, dans les cellules cancéreuses, on observe souvent que les sous-domaines ne sont pas associés, conduisant à de fausses associations et à des erreurs de ségrégation chromosomique.

Cette découverte passionnante et très fondamentale contribue à notre compréhension de l’origine des erreurs de ségrégation chromosomique qui apparaissent fréquemment dans le cancer.

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Comme une imprimante 3D, un ver marin forme des poils morceau par morceau : étude

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Comme une imprimante 3D, un ver marin forme des poils morceau par morceau : étude

Une nouvelle étude a mis en lumière la façon dont certains vers marins forment des poils, qui sont des protubérances ressemblant à des poils de chaque côté.

Une équipe de chercheurs, dirigée par le biologiste moléculaire Florian Raebel des laboratoires Max Perutz de l’université de Vienne, a utilisé des techniques d’imagerie avancées pour étudier de près Platinieris DumerelliCe qui est souvent considéré comme un fossile vivant.

Ces annélides possèdent des poils inhabituels qui leur permettent de naviguer dans leur environnement aquatique. Mais comment se forment ces structures complexes ? Il s’avère que ces espèces développent leurs poils morceau par morceau, à la manière du processus d’impression 3D.

Processus naturel complexe

Les chitoplastes, cellules spécialisées des vers, contrôlent ce processus biologique. Ces cellules produisent de la chitine, une substance fibreuse et résistante qui joue un rôle clé dans la formation des cheveux.

« Le processus commence par la pointe des poils, suivi par la section centrale et enfin par la base des poils. Les parties terminales sont poussées de plus en plus loin du corps. Dans ce processus de développement, des modules fonctionnels importants sont créés un par un, pièce par pièce, ce qui est similaire à l’impression 3D.

Cette biogenèse est un processus complexe. Ces cellules chitoplastes sont composées de longues structures superficielles appelées microvillosités. Les microvillosités chitoplastes contiennent une enzyme spéciale nécessaire à la formation de chitine.

Tout comme les buses d’une imprimante 3D, ces microvillosités sculptent avec précision les filaments, couche par couche.

« Notre analyse suggère que la chitine est produite par des microvillosités individuelles de la cellule chitoplaste », a déclaré Raible.

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Le changement précis du nombre et de la forme de ces microvillosités au fil du temps était donc essentiel à la formation des structures géométriques des filaments individuels, telles que les dents individuelles à l’extrémité des filaments, qui étaient précises jusqu’à l’échelle submicrométrique. Il ajouta.

Différentes parties des poils de l’annélide marin Platynereis dumerilii. Reconstruction 3D à partir de plus de 1000 micrographies électroniques. Lame (à gauche), lame articulée (au milieu), manche (à droite). Ilija Belevich, Université d’Helsinki

Cette compréhension peut conduire à la création de produits médicaux

Fait intéressant, en quelques jours, ces structures passent de la formation initiale à la pleine maturité, prêtes à assister le ver dans sa vie aquatique. De plus, les poils peuvent avoir différentes formes et longueurs.

À mesure que le ver mûrit, la forme de ses poils peut changer radicalement. Par exemple, ils peuvent devenir plus courts ou plus longs, plus pointus ou plats, selon les besoins du ver et les conditions environnementales.

Les chercheurs ont révélé les secrets de la formation des cheveux grâce à des techniques d’imagerie avancées.

Ils ont créé des modèles 3D détaillés à l’aide de la microscopie électronique à balayage en série du visage, fournissant ainsi des informations sans précédent sur ce processus biologique.

Il est intéressant de noter que l’équipe souligne que la compréhension de ce processus biologique pourrait conduire au développement de nouveaux produits médicaux et de matériaux naturellement biodégradables à l’avenir.

Selon communiqué de presseLa chitine molle trouvée dans le calmar est déjà utilisée « comme matière première pour la production de pansements bien tolérés ».

Ce travail de recherche a été réalisé en coopération avec l’Université d’Helsinki, l’Université de technologie de Vienne et l’Université Masaryk de Brno.

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Les résultats ont été publiés dans la revue Communication naturelle.

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Mrigakshi Dixit Mrijakshi est un journaliste scientifique qui aime écrire sur l’exploration spatiale, la biologie et les innovations technologiques. Son expérience professionnelle inclut à la fois les médias audiovisuels et numériques, ce qui lui a permis d’apprendre une variété de formats de narration. Ses travaux ont été publiés dans des publications bien connues, notamment Nature India, Supercluster et Astronomy. Si vous avez des offres en tête, n’hésitez pas à leur envoyer un email.

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Les chercheurs peuvent désormais mesurer précisément l’émergence et l’amortissement du champ plasmonique

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Les chercheurs peuvent désormais mesurer précisément l’émergence et l’amortissement du champ plasmonique

Une équipe de recherche internationale dirigée par l’Université de Hambourg, DESY et l’Université de Stanford, a développé une nouvelle approche pour caractériser le champ électrique d’échantillons plasmoniques aléatoires, tels que les nanoparticules d’or. Les matériaux plasmoniques présentent un intérêt particulier en raison de leur extraordinaire efficacité à absorber la lumière, ce qui est crucial pour les énergies renouvelables et d’autres technologies. Dans la revue Nano Letters, les chercheurs rendent compte de leur étude, qui fera progresser les domaines de la nanoplasmonique et de la nanophotonique grâce à ses plateformes technologiques prometteuses.


Une impulsion laser très courte (couleur bleue) excite les nanotiges d’or plasmoniques, entraînant des changements caractéristiques dans le champ électrique transmis (couleur jaune). L’échantillonnage de ce champ permet de déduire le champ plasmonique de la nanoparticule.

Les plasmons de surface localisés constituent une excitation unique d’électrons dans des métaux à l’échelle nanométrique tels que l’or ou l’argent, où les électrons mobiles du métal oscillent collectivement avec le champ photoélectrique. Cela conduit à une intensification de l’énergie lumineuse, ce qui permet des applications en photonique et en conversion d’énergie, par exemple en photocatalyse. Pour développer de telles applications, il est important de comprendre les détails de l’entraînement et de l’amortissement du plasma. Cependant, le développement d’expériences pertinentes pose un problème : les processus se déroulent sur des échelles de temps très courtes (quelques femtosecondes).

La communauté attoseconde, dont les auteurs principaux Matthias Kling et Francesca Calligari, ont développé des instruments pour mesurer le champ électrique oscillant des impulsions laser ultracourtes. Dans l’une de ces méthodes d’échantillonnage sur le terrain, une impulsion laser intense est focalisée dans l’air entre deux électrodes, générant un courant pouvant être mesuré. L’impulsion intense est ensuite recouverte d’une impulsion de signal faible qui sera décrite. L’impulsion du signal module le taux d’ionisation et donc le courant généré. L’examen du délai entre les deux impulsions fournit un signal dépendant du temps et proportionnel au champ électrique de l’impulsion du signal.

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« Nous avons utilisé cette configuration pour la première fois pour caractériser le champ de signal émergeant d’un échantillon plasmonique du matériau excité par résonance », explique Francesca Calligari, scientifique principale à DESY, professeur de physique à l’Université de Hambourg et porte-parole du CUI : Pôle d’excellence en imagerie avancée. La différence entre l’impulsion reconstruite et l’interaction du plasmon avec l’impulsion de référence a permis aux scientifiques de suivre l’émergence et la désintégration rapide du plasmon, ce qu’ils ont confirmé par des calculs de modèles électrodynamiques.

« Notre approche peut être utilisée pour caractériser des échantillons plasmoniques arbitraires dans des conditions ambiantes et en champ lointain », ajoute le professeur Holger Lange, scientifique du CUI. De plus, une caractérisation précise du champ laser issu des nanomatériaux plasmoniques pourrait constituer un nouvel outil pour améliorer la conception de dispositifs de mise en forme de phase pour les impulsions laser ultracourtes.

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